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COLORACIÓN DE ZIEHL-NEELSEN
USO PRETENDIDO:
Sistema para coloración de bactérias Alcohol-ácido resistentes en frotis de material
recogido en las diversas áreas del organismo y frotis de medio de cultivo.
PRINCÍPIO:
Las microbactérias presentan grande cantidad de lípidos en sus paredes celulares.
Cuando tratadas por el colorante Fucsina Fenicada, se coloran de rojo y persisten a la
decoloración posterior por una solución de Álcohol-ácido fuerte (diferenciador). Por
ese motivo son conocidas como Bacilos Álcohol-Ácido Resistentes (BAAR). Las otras
bactérias, que no tienen tales paredes celulares ricas en lípidos, tienen su coloración
por la Fucsina decolorada por la solución de Álcohol-ácido y se coloran en azul por la
coloración de fondo del Azul de Metileno (contra colorante).
REACTIVOS Y PRESENTACIÓN:
1. Solución de Fucsina Fenicada a 0,5% --------- 500 mL
2. Solución de Álcohol-Ácido a 3 % ---------------- 500 mL
3. Solución de Azul de Metileno a 0,3 % ---------- 500 mL
PRESENTACIÓN: 3 Frascos de 500mL
ALMACENAMIENTO Y ESTABILIDAD DE LOS REACTIVOS:
Los colorantes deben ser mantenidos en el frasco original, bien sellado, en
temperatura ambiente y al abrigo de la luz.
CUIDADOS Y PRECAUCIONES:
Las soluciones colorantes son para uso diagnóstico “in vitro”. Su manipulación debe
ser cuidadosa, evitando el contacto con la piel y mucosas. En caso de contaminación
accidental lavar el área afectada en água corriente. El descarte del material utilizado
debe ser hecho obedeciendo los criterios de bioseguridad establecidos por el
laboratório.
Excepto las manchas provocadas por los colorantes, el producto no ofrece riesgo al
medio ambiente o personas, dentro de las normas y condiciones de uso.
Mantener lejos del fuego y calor.
MUESTRAS:
Frotís hechos partir de colónias bacterianas. Frotís de secreciones de las más diversas
partes del organismo. Frotís del sedimento urinário.
Todas las muestras biológicas deben ser consideradas como potencialmente
infectantes.
PROCEDIMIENTO TÉCNICO:
1. Fijar el frotis;
2. Poner las láminas en el soporte de coloración;
3. Cubrir las láminas con Fucsina de Ziehl;
4. Calentar las láminas por 5 minutos, permitiendo la salida de vapores y evitando la
ebullición de la fucsina;
5. Luego 5 minutos, escurrir y lavar las láminas delicadamente con água;
6. Decolorar las láminas con solución de álcohol- ácido hasta que se quede
completamente clara;
7. Lavar las láminas con água corriente;
8. Colorar con Azul de Metileno por 1 minuto;
9. Lavar con água corriente y secar.
INTERPRETACIÓN DE LOS RESULTADOS:
Las bactérias ácohol-ácido resistentes se presentan de color rosa a rojada. Las demás
bactérias (no álcohol-ácido resistentes), elementos celulares y desechos, se coloran
en azul por la solución de azul de metileno.
MATERIALES NECESARIOS NO OFRECIDOS:
1. Soporte para coloración;
2. Láminas.
3. Boquilla de Bunsen
CONTROL DE CALIDAD:
Antes de seren liberadas para consumo las matérias primas y los reactivos son
evaluados por el Laboratório de Control de Calidad de la Renylab.
La limpieza y secado adecuado del material a ser utilizados son de fundamental
importancia para la estabilidad de los reactivos y obtención de resultados correctos.
No usar detergentes hechos de fosfato. El água usada en la limpieza del material debe
ser de buena calidad. Las láminas utilizadas deben ser completamente límpias,
exentas de gordura.
CARACTERÍSTICAS DE RENDIMIENTO:
Repetitividad: fueron hechas pruebas con el colorante bacteriológico en 15 frotis de
esputos de pacientes con tuberculosis. Paralelamente 15 frotis de secreción de
orofaringe fueron colorados con el colorante. Se observó que la repetitividad se
relaciona con el correcto seguimiento de las instrucciones de uso, siendo decisivas las
etapas de fijación, los tiempos de coloración y la temperatura de calentamiento de la
fucsina.
Reproductividad: Por 6 meses seguidos fueron realizadas pruebas en frotis de
culturas de bacilos álcohol-ácido resistentes, usandose el mismo lote del producto. Por
todo el período, hubo concordancia de las características tintóreas de los bacilos
BAAR y de los bacilos no álcohol-ácido resistentes.
BIBLOGRAFIA:
1. Otto Bier: Bacteriologia e imunologia, 19 edição, 1978. Who: Manual of basic
techniques for a health laboratory, 1980.
2. Stanley S. Raphael: Lynch: Técnicas de laboratório, 1986.
DOCUMENTO DE GARANTÍA:
La RenyLab Química e Farmacêutica garantiza el cambio de este conjunto
diagnóstico, siempre que el conjunto esté dentro de la fecha de caducidad y sea
comprobado por su Asesoría Técnica que no hubo fallos en la aplicación,
manipulación y conservación de este producto.
La RenyLab y sus distribuidores no se responsabilizan por fallos en el rendimiento del
conjunto bajo estas condiciones.
RenyLab Química e Farmacêutica Ltda
Rodovia BR 040 km 697 Caiçaras
RUC / NIT / RUT: 00.562.583/0001-44
CEP 36.205-666 - Barbacena – MG - Brasil
Teléfono (+55 32) 3052-7746 / 3331-4489
Responsable técnico: Renê Vaz de Mello
CRF-MG: 2709
www.renylab.ind.br
Registro en el Ministério de la Salud: 80002670066
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